Lixiviacion bacteriana
La lixiviación por bacterias es un método
establecido para tratar oro refractario y
minerales o concentrados de metales
base. SGS Servicios Minerales ha
realizado pruebas para numerosos
proyectos para el desarrollo y optimización
de diagramas de flujo, incluyendo pruebas
a escala de banco y de planta piloto, y
auditoría y resolución de problemas en
plantas en operación en Sudáfrica, Brasil,
Ghana, Australia, Uzbekistán, Perú, Chile,
Grecia y los EE.UU.
Los servicios de SGS Servicios Minerales
incluyen:
• Investigación y desarrollo
• Pruebas de sensibilidad
• Desarrollo de diagramas de flujo
• Plantas piloto continuas con
procesamiento de flujo integrado
• Auditorías de plantas y resolución de
problemas
Algunos clientes nos han solicitado
establecer instalaciones de prueba de
lixiviación por bacteria para cumplir con la
necesidad de:
• Una instalación de pruebas
independiente, no asociada a interés
alguno de procesamiento ni ingeniería
• Un “taller de parada única” que
ofrezca instalaciones para probar
procesos alternativos de oxidación
incluyendo bacterias, oxidación pro
presión, Activox® y tostado
Las tecnologías testeadas incluyen:
• BIOX®
• GEOCOAT®
• (Lixiviación en pilas o capas delgadas
de concentrados de flotación de baja
ley)
• Procesos BacTech
• Otras tecnologías que no son de
propiedad registrada
La experiencia de SGS con el proceso
BIOX® (bacterias mesofílicas) va desde
las pruebas de confirmación hasta la
movilización de plantas. La investigación
actual incluye pruebas piloto de
concentrados de calcopirita-calcositacovelita
usando bacterias mesofílicas.
Usamos procesos GEOCOAT® en
simulación de lixiviación en pilas,
pruebas de lixiviación en columnas
de diferentes minerales de sulfato
incluyendo pirita, enargita y esfalerita,
usando bacterias mesófilas y termófilas
extremas. Tenemos licencia para usar las
tecnologías BacTech y hemos completado
varios proyectos según indicación.
Nuestra investigación actual se concentra
en la investigación de la oxidación de la
calcopirita.
LIXIVIACIÓN POR AGLOMERACIÓN DE
CONCENTRADOS
SGS Servicios Minerales Australia
ha desarrollado una técnica para
lixiviación en pilas o capas delgadas de
concentrados de flotación de baja ley.
Un agente aglomerador es usado para
adherir los concentrados molidos a la
superficie de un portador inerte. Un
portador adecuado es roca competente
chancada tal como el granito en el rango
de tamaño de 10 – 12 mm. El aglomerado
es apilado en una columna y tratado por
lixiviación de percolación para oxidar los
minerales sulfurosos. Esta técnica puede
ser aplicable a concentrados de baja ley
donde la lixiviación agitada por bacterias
o la lixiviación por presión no resultarían
económicas.
Estudios sobre el efecto de la concentración de nutrientes en la lixiviación
microbiológica de un concentrado de sulfuro de zinc indicaron que la
concentración de amonio controlaba el rendimiento, mientras que la
concentración de fosfato afectaba la velocidad de extracción del zinc.
La
concentración de los factores de crecimiento no tuvo efectos detectables
sobre la oxidación del substrato.
En medio ácido de lixiviación de sulfuros la solubilidad del oxígeno y el CO2
es baja, y una velocidad máxima de transferencia de masa de estos gases se
requiere para mantener el crecimiento bacterial.
En la ecuación (73) se puede apreciar que la oxidación de un mol de sulfuro
requiere de 2 moles de oxígeno o, lo que es lo mismo, un kilogramo de
azufre del sulfuro requiere para su oxidación de dos kilogramos de oxígeno.
Dos kilogramos de oxígeno en condiciones normales ocupan 1,400 litros y
su solubilidad en agua a 30 - 35 °C es del orden de 7 ppm por lo que los
2 kg requerirán de unos 285,000 litros de solución acuosa. Estas cifras
indican que el problema de la aireación en este proceso es importante y que
debe ser considerado preferencialmente.
Desde luego, las cifras parecen
señalar que un sistema de lixiviación estática no es adecuado, por lo tanto
los esfuerzos deben estar encaminados hacia el diseño de instalaciones con
agitación y con recirculación.
Estudiando el efecto del dióxido de carbono sobre la actividad bacterial,
se observó que la velocidad de oxidación de la pirita por el T. Ferrooxidans
gradualmente disminuyó.
Esto sucedió cuando se eliminó el CO2
del aire
BIOLIXIVIACIÓN, Tecnología de la Lixiviación Bacteriana de Minerales 103
usado para aireación. Aumentando el contenido del CO2
del aire se estimuló
el crecimiento del T. Ferrooxidans usado como substrato.
Los mejores
resultados para este proceso de oxidación fueron obtenidos cuando el
contenido de CO2
se aumentó a 2%.
Estudiando el efecto de la concentración de substrato sólido (ZnS) a diferentes
concentraciones de CO2
, es decir, variando desde 0.03 a 7.92%, se encontró que
la concentración óptima de CO2
es 0.2% en términos de velocidad más alta de
extracción de zinc. Sin embargo, todos los datos anteriores del efecto del CO2
sobre el crecimiento del Thiobacillus Ferrooxidans son de carácter preliminar.
La oxidación de fierro ferroso por el T. Ferrooxidans requiere la presencia
del ión sulfato, probablemente, como un agente complejante. Cuando es
cultivado sobre azufre elemental o sulfuros la adición de sulfato externo no
es necesaria, puesto que el producto de la oxidación es el sulfato.
2.12.12 Efecto del ión férrico
La lixiviación microbiológica de los sulfuros es acelerada en presencia del ión
férrico, el cual se sabe que es un buen agente oxidante.
Este efecto catalítico
se puede expresar como sigue:
(172)
donde M es un metal bivalente. El azufre elemental que ha sido dejado libre
(ecuación 172) será oxidado a ácido sulfúrico por el T. Ferrooxidans.
Similarmente, el fierro ferroso es oxidado por los microorganismos.
y, entonces, el ciclo rédox del fierro se repite. Varios investigadores discutieron
el efecto del fierro, aunque determinaciones cuantitativas fueron reportados
recientemente. Estos estudios indicaron que los microorganismos son
capaces de oxidar substratos libres de fierro (NiS, CoS, Cu2S y CuS); y en
presencia de concentraciones de ión férrico de 10-4 a 10-2 moles por litro
la velocidad de extracción del metal fue mucho mayor.
Concentraciones
mayores de fierro no fueron efectivas en este proceso. El potencial rédox
del par Ferroso /Férrico a 25 °C es:
(173)
(174)
(175)
CULTIVO DE BACTERIAS
El medio más favorable para cultivar las bacterias es el medio 9K con fierro ferroso
(ver pág. 115 y procedimiento de aislamiento de cultivos pág. 50). Es aconsejable
obtener cultivos a partir de bacterias que existen, no solamente, en el área de
trabajo, sino en la región o área de la planta de lixiviación. Estas bacterias estarán por
naturaleza ya aclimatadas al tipo de substrato, temperatura, limitaciones de oxígeno
debido a la altitud del lugar, etc. Por consiguiente, el estudio de los diferentes
puntos donde las bacterias pueden ser obtenidas debe ser prioritario al estudio de
la lixiviación bacteriana.
Una vez detectada la existencia de bacterias en riachuelos, aguas de mina, lagos, etc., de la
región, se debe proceder al cultivo de éstas con el propósito de disponer de un stock que
permita efectuar pruebas de laboratorio en columna.
Un procedimiento sencillo para iniciar los cultivos consiste en tomar un frasco
erlenmeyer de 250 ml al cual se agrega 70 ml de medio 9K con fierro ferroso y 10 ml
de agua de mina. Luego se efectúan los siguientes controles:
• Corregir el pH de la solución a 2.0 con H2
SO4
1N
• Agitar fuertemente la solución para favorecer la oxigenación
• Mantener la temperatura en 35 °C
Al cabo de 2 o 3 días de constante agitación a 35 °C, se observa un cambio de
coloración en la solución a un tono anaranjado débil. Este cambiará paulatinamente
a marrón oscuro debido a la oxidación del ferroso a férrico por la acción bacteriana.
Es evidente que el fierro también pudo ser oxidado por el O2
, sin embargo, este
proceso de oxidación es tan rápido y complejo que hay que pensar en otra causa:
Las bacterias.
Un control adicional, además del color, sería analizando el T/Fe y Fe3+ existente en
solución. La presencia mayoritaria de Fe3+ indicará que todo el Fe ha sido oxidado,
y la necesidad de transferir las bacterias a otro substrato más fresco. Para ello se
toman 10 ml de solución color marrón y se transfiere a otro erlenmeyer conteniendo
70 ml de medio 9K.
Esta operación se repite continuamente hasta disponer de un stock grande de bacterias.
La transferencia y cultivo de estas bacterias a un substrato de mineral, constituye el
próximo paso, cuya importancia es necesario recalcar.
Los minerales elegidos deben ser representativos del cuerpo de mineral que forma
las pilas a lixiviar. Es evidente que compósitos generales del mineral también deben
ser estudiados bacteriológicamente.
El procedimiento de laboratorio a seguir es simple y consiste en tomar 30 g de
muestra representativa de mineral malla -400, el cual se coloca en un erlenmeyer de
BIOLIXIVIACIÓN, Tecnología de la Lixiviación Bacteriana de Minerales 123
250 ml. Se añade 70 ml de medio 9K más Fe2+, se agita fuertemente y se procede a
ajustar el pH de la pulpa a 2.0, añadiendo H2
SO4
1N. La adición de ácido se hace hasta
que el pH se estabiliza en 2.0. En este punto, la solución se deja sedimentar y se toma
una muestra de 1 ml y se analiza por cobre y fierro total.
Luego se inocula la solución con 5 ml de solución marrón conteniendo bacterias.
El consumo de ácido es determinado exactamente en el punto de estabilización del pH.
A continuación, el frasco conteniendo el mineral medio 9K más inóculo es pesado.
Este peso correspondería a la hora cero de lixiviación. En esta hora se vuelve a tomar
1 ml de muestra y se analiza por cobre y fierro.
El control y muestreo de la solución se efectúa cada 24 horas. El primer paso a seguir
es ajustar el peso del erlenmeyer al peso original agregando agua a pH 2.0. Una vez
conseguido el peso original se toma 1 ml de muestra para analizar por cobre y fierro; y
luego se procede a ajustar el pH de la solución agregando H2
SO4
6N o 1N.
Según esta Figura la prueba debe ser detenida en el punto A, que corresponde a un
tiempo T. Continuar con la prueba, pese a haberse alcanzado la máxima extracción
posible, podría provocar la inactividad de las bacterias debido a que prácticamente
todo el substrato ya ha sido consumido.
Por otro lado, el punto A nos muestra el punto de máxima actividad bacteriana en donde
las bacterias en pleno desarrollo y reproducción han abandonado el substrato sólido
y están en la solución. Esta misma solución será el inóculo para el próximo cultivo, y
así sucesivamente hasta disponer de un stock grande de bacterias desarrolladas en
diferentes tipos de minerales. Cambios de condiciones tales como temperatura, acidez,
nutrientes, etc. pueden entonces ser efectuadas con mayor tranquilidad.
124 BIOLIXIVIACIÓN, Tecnología de la Lixiviación Bacteriana de Minerales Curvas de lixiviación típicas para Cu2
S y CuFeS2
El erlenmeyer durante estas pruebas debe estar constantemente agitado y
preferiblemente a una temperatura variable entre 30 - 35 °C, y en oscuridad.
La forma recomendable de efectuar el control de estas pruebas es registrando todos
los datos en un libro que debe contener básicamente los siguientes datos:
- Fecha
- Hora de lixiviación
- pH inicial
- pH final
- acido añadido
- análisis por: Cu2+, T/Fe, Fe3+
- mg. de cobre extraído
- Porcentaje de cobre extraído
El residuo final obtenido debe ser estudiado mineralógicamente para determinar las
especies residuales. Estos residuos deben ser analizados por cobre para chequear el
porcentaje de extracción obtenido a partir de los análisis de las soluciones impregnadas.
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